硝酸还原酶NR活性检测试剂盒微量法

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硝酸还原酶(NR)活性检测试剂盒(微量法)

产品货号:BA

产品规格:管/96样

产品简介:

NR(EC1.7.1.3)广泛存在于植物中,是植物硝态氮转化为氨态氮的关键酶,也是诱导酶,对作物的产量和品质有影响。

NR催化硝酸盐还原为亚硝酸盐,NO3ˉ+NADH+H+→NO2ˉ+NAD++H2O,NADH在nm下有特征吸收峰,nm下吸光值的变化即可表示酶活。

注意:实验之前建议选择2-3个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。

产品组成:

溶液的配制:

1.诱导剂储备液:用蒸馏水10倍稀释后使用,即取10mL诱导剂储备液加90mL蒸馏水,充分混匀。现配现用。

2.试剂二:临用前加入2mL提取液溶解,可分装后-20℃保存,避免反复冻融。-20℃保存2周。

需自备的仪器和用品:

紫外分光光度计/酶标仪、水浴锅、台式离心机、微量石英比色皿/96孔UV板、研钵/匀浆器、冰和蒸馏水。

操作步骤:

一、样本处理(可适当调整待测样本量,具体比例可以参考文献)

1.取适量诱导剂于烧杯中,将新鲜标本洗净,滤纸吸干,放入诱导剂应用液中(淹没即可)避光,浸泡2h,取出样本,滤纸吸干后,-20℃冷冻30min,取出样本,滤纸吸干。(根据需要进行诱导处理)

2.称取约0.1g样本,加入1mL提取液,冰浴研磨,g,4℃离心10min,取上清置冰上待测。

二、测定步骤

1.分光光度计/酶标仪预热30min以上,调节波长至nm,蒸馏水调零。

2.样本测定(在EP管中加入下列试剂)

充分混匀后测定nm下的初始值A1,25℃(其他物种)或37℃(哺乳动物)反应30min后再次测定吸光值A2,计算ΔA测定管=A1测定管-A2测定管,ΔA空白管=A1空白管-A2空白管,ΔA=ΔA测定管-ΔA空白管。(空白管只需测1-2次)

三、NR活性计算

1.按微量石英比色皿计算:

(1)按样本质量计算:

酶活单位定义:每小时每g样本中消耗1μmolNADH的量为一个NR活力单位。

NR(U/g质量)=[ΔA×V反总÷(ε×d)×]÷(W÷V提取×V样)÷T=5.×ΔA÷W

(2)按样本蛋白浓度计算:

酶活单位定义:每小时每mg组织蛋白消耗1μmolNADH的量为一个NR活力单位。

NR(U/mgprot)=[ΔA×V反总÷(ε×d)×]÷(V样×Cpr)÷T=5.×ΔA÷Cpr

V反总:反应体系体积,2×10-4L;V样:吸取样本体积,0.mL;V提取:加入提取液体积,1mL;T:反应时间,0.5h;ε:NADH的摩尔消光系数,L/mol/cm;d:比色皿光径,1cm;Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mL;W:样本质量,g;:单位换算系数,1mol=μmol。

2.按96孔UV板计算:

将上述公式中的d-1cm换为d-0.6cm(96孔板光径)进行计算即可。

注意事项:

1.当测定的吸光值大于1.5或者ΔA大于0.5时,建议将上清液稀释后测定。

2.ΔA测定过小(小于0.01),可延长酶促反应时间。

3.建议一次测定不要测定过多样本以免耽误过多的酶促反应时间。

4.空白管为检测各试剂组分质量的检测孔,正常情况下,变化不超过0.05。




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