硫氧还蛋白过氧化物酶（thioredoxinperoxidase,TPX）活性测定试剂盒说明书
分光光度法50管/48样
注意：正式测定之前选择2-3个预期差异大的样本做预测定。
测定意义：
TPX属于过氧化物酶家族，在体内主要通过还原过氧化氢和一些氢过氧化物来实现抗氧化作用，功能与GPX类似，也是谷胱甘肽氧化还原循环关键酶之一。TPX普遍存在于各种生物体内，如酵母、植物、动物、原生动物、寄生虫、细菌和古细菌，在进化上高度保守。TPX与细胞增殖、分化、细胞凋亡及肿瘤发生调控密切相关。TPX的主要功能包括细胞脱毒、抗氧化和调节由过氧化氢介导的信号转导和免疫反应。
测定原理：
TPX催化H2O2氧化二硫苏糖醇（DTT），H2O2的吸收波长为nm，通过测定nm吸光度的下降速率，即可计算出TPX活性。
自备仪器和用品:
紫外分光光度计、低温离心机、水浴锅、可调节移液器、1mL石英比色皿和蒸馏水
试剂组成和配制:
试剂一：液体50mL×1瓶，室温保存。
试剂二：液体50mL×1瓶，-20℃保存。
试剂三：液体5mL×1瓶，4℃。
粗酶液提取：
1.组织：按照组织质量（g）：试剂一体积(mL)为1：5~10的比例（建议称取约0.1g组织，加入1mL试剂一）进行冰浴匀浆。g，4℃离心10min，取上清置冰上待测。
2.细菌、真菌：按照细胞数量（个）：试剂一体积（mL）为~：1的比例（建议万细胞加入1mL试剂一），冰浴超声波破碎细胞（功率w，超声3秒，间隔7秒，总时间3min）；然后g，4℃，离心10min，取上清置于冰上待测。
3.血清等液体：直接测定。
TPX测定操作：
1.分光光度计预热30min，调节波长到nm，蒸馏水调零。
2.试剂二置于25℃（一般物种）或者37℃（哺乳动物）水浴预热30min。
3.取1mL石英比色皿，加入20μL上清液，μL试剂二，80μL试剂三，迅速混匀后于nm测定10s和s吸光度，记为A1和A2。
TPX活性计算公式：
(1)按蛋白浓度计算
活性单位定义：25℃或者37℃中，每毫克蛋白每分钟催化1nmolH2O2降解为1个酶活单位。
TPX活性（nmol/min/mgprot）=(A1－A2)÷ε÷d×V反总÷（Cpr×V样）÷T
=×(A1－A2)÷Cpr
(2)按样本质量计算
活性单位定义：25℃或者37℃中，每克样本每分钟催化1nmolH2O2降解为1个酶活单位。
TPX活性（nmol/min/g鲜重）=(A1－A2)÷ε÷d×V反总÷(W×V样÷V样总)÷T
=×(A1－A2)÷W
（3）按细胞数量计算
活性单位定义：25℃或者37℃中，每个细胞每分钟催化1nmolH2O2降解为1个酶活单位。
TPX活性（nmol/min/cell）=(A1－A2)÷ε÷d×V反总÷(细胞数量×V样÷V样总)÷T
=×(A1－A2)÷细胞数量
（4）按液体体积计算
活性单位定义：25℃或者37℃中，每毫升液体每分钟催化1nmolH2O2降解为1个酶活单位。
TPX活性（nmol/min/mL）=(A1－A2)÷ε÷d×V反总÷V样÷T
=×(A1－A2)
ε：H2O2的摩尔消光系数，L/mol/cm=0.L/μmol/cm；d：比色皿光径，1cm；V反总：反应体系总体积（L），μL=0.L；Cpr：上清液蛋白质浓度（mg/mL）；V样：加入反应体系中上清液体积（mL），20μL=0.02mL；V样总：加入提取液体积
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