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个人解读GB2

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食品微生物学检验菌落总数测定

1范围本标准规定了食品中菌落总数(Aerobicplatecount)的测定方法。本标准适用于食品中菌落总数的测定。2术语和定义菌落总数aerobicplatecount食品检样经过处理,在一定条件下(如培养基、培养温度和培养时间等)培养后,所得每g(mL)检样中形成的微生物菌落总数。检验菌种类:需氧情况下,37℃培养48h,能在普通营养琼脂平板上生长的细菌。不含厌氧或微需氧菌、有特殊营养要求的以及非嗜中温的细菌。也不包括真菌,真菌有单独的检验方法。菌落总测定是用于判定食品被细菌污染的程度和卫生质量,反应食品在生产过程中是否符合卫生要求。3设备和材料除微生物实验室常规灭菌及培养设备外,其他设备和材料如下:3.1恒温培养箱:36℃±1℃,30℃±1℃。主要为细菌的培养提供恒定的温度

3.2冰箱:2℃~5℃。

用于试剂及菌株的保存3.3恒温水浴箱:46℃±1℃。

用于对已灭菌但未用的固体培养基的保温;

温度可以在46℃~50℃之间,只要用时温度合适就行

3.4天平:感量为0.1g。称取培养基及样品称取,需单独两个天平,一个放准备室,一个放检测室3.5均质器。对待检试样液的均质,使试样液的菌含量保持一致,包括匀浆机和拍打式均质器,匀浆机涉及到固体非粉末状样品,拍打式均质器适用于除固体非粉末状样品外的样品3.6振荡器。与均质器作用一致3.7无菌吸管:1mL(具0.01mL刻度)、10mL(具0.1mL刻度)或微量移液器及吸头。用于试液转移,微量移液器需定时检定和灭菌,一次性吸头需湿热灭菌处理后烘干水分再使用3.8无菌锥形瓶:容量mL、mL。盛装培养基及试样液,试样液可用均质袋替代

3.9无菌培养皿:直径90mm。

玻璃培养皿灭菌需放入金属灭菌桶后选用恒温干燥箱℃灭菌3小时及以上,一次性塑料无菌培养皿拆包装前需紫外杀菌15min以上3.10pH计或pH比色管或精密pH试纸。仅用于自配培养基的pH调节,商用培养基基本上不需要调节pH值3.11放大镜或/和菌落计数器。用于培养后的培养基进行菌落计数4培养基和试剂4.1平板计数琼脂培养基:见A.1。主要培养基,成分适合细菌进行繁殖4.2磷酸盐缓冲液:见A.2。成分较无菌生理盐水更科学合理,磷酸盐可在适宜范围内调节试样液本身pH,降低因样品本身的pH对实验造成影响,适用于酸类、碱类和高盐类样品的菌落计数。用前需湿热灭菌℃持续15min(推荐用)4.3无菌生理盐水:见A.3。较磷酸盐缓冲液优势为更易配制。用前需湿热灭菌℃持续15min5检验程序菌落总数的检验程序见图1。图1菌落总数的检验程序6操作步骤除样品外所有操作需要使用的试剂耗材,必须灭菌,设备设施可采用紫外杀菌及75%浓度酒精擦拭后使用6.1样品的稀释6.1.1固体和半固体样品:称取25g样品置于盛有mL磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌均质杯内,r/min~r/min均质1min~2min,或放入盛有mL稀释液的无菌均质袋中,用拍击式均质器拍打1min~2min,制成1∶10的样品匀液。

25g样品:精确到0.1g,偏差25+0.2g,尽量不要偏差太大,可多不可少。

在标准无规定的情况下,最好按25g称样进行实验,这符合GB.1中对抽样遵循代表性原则。当称样数量越少,代表性越差。

mL稀释液:可使用灭菌后的量筒量取,也可以配制分装好后灭菌直接用(比灭菌后量取劣势为水分灭菌易挥发,导致稀释液浓度改变)。用哪种可自由选择,但特殊样品(酸类、碱类、高盐类)尽量使用磷酸盐缓冲液,避免样品本身PH造成实验误差。

均质器拍打:固体样品可选用均质器均质,使样液混匀;速溶类样品可不用均质器。1:10样品匀液:1mL样液→9mL试管稀释液=10mL匀液,样液加入后可使用无菌吸管吹打(尽量不用,减少污染),也可摇匀,尽量使液体保持在试管口以下。6.1.2液体样品:以无菌吸管吸取25mL样品置盛有mL磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌锥形瓶(瓶内预置适当数量的无菌玻璃珠)中,充分混匀,制成1∶10的样品匀液。无菌玻璃珠:用于混匀样液与缓冲液6.1.3用1mL无菌吸管或微量移液器吸取1∶10样品匀液1mL,沿管壁缓慢注于盛有9mL稀释液的无菌试管中(注意吸管或吸头尖端不要触及稀释液面),振摇试管或换用1支无菌吸管反复吹打使其混合均匀,制成1∶的样品匀液。

沿管壁缓慢注:可能在管壁残留细菌,需要震摇试管,将管壁上的试液混合于匀液中。若使用无菌吸头,可直接垂直于试管将试液打入稀释液中,不靠试管壁,吸头不入液面。

在样品菌落数范围未知/无法通过以往样品判断菌落数范围时,应多做几个稀释度。

6.1.4按6.1.3操作,制备10倍系列稀释样品匀液。每递增稀释一次,换用1次1mL无菌吸管或吸头。尽量避免稀释梯度之间的污染6.1.5根据对样品污染状况的估计,选择2个~3个适宜稀释度的样品匀液(液体样品可包括原液),在进行10倍递增稀释时,吸取1mL样品匀液于无菌平皿内,每个稀释度做两个平皿。同时,分别吸取1mL空白稀释液加入两个无菌平皿内作空白对照。

根据以往的样品大概的菌含量预估样品的菌含量,适当选择2个~3个稀释梯度,可以选择2个稀释梯度,但必须有1个至2个梯度的菌含量在范围内

例:-1(皿1皿2)-2(皿1皿2)空白(皿1皿2)

6.1.6及时将15mL~20mL冷却至46℃的平板计数琼脂培养基(可放置于46℃±1℃恒温水浴箱中保温)倾注平皿,并转动平皿使其混合均匀。

平板计数琼脂培养基温度需适宜,以不烫手为宜(水浴箱中拿出的培养基温度适中,可直接使用,无需冷却)。

有些样品为避免白色食物残渣在计数时的影响,会在PCA中加入TTC(各大培养基厂商有售无菌TTC溶液),使培养后的菌落呈红色。此项适用于食物残渣中含白色物质。

转动平皿使其混合均匀:平皿保持同方向,手拿平皿边缘按前后运动、左右运动、顺时针混匀,禁止培养基因大力转动造成溢出,培养基冷凝后方可倒置平皿培养。

本标准未规定称取至倒培养基的过程时间,一旦样品过多,尽量保持在45min之内。(新标准意见稿中也没写,.3中写大肠菌群操作时间是15min,为的是避免过程中因时间过长导致细菌繁殖)

6.2培养6.2.1待琼脂凝固后,将平板翻转,36℃±1℃培养48h±2h。水产品30℃±1℃培养72h±3h。

倒置平皿培养,温度36℃±1℃,记录温度时需准确,不出现±符号。一般培养箱检定时会提供一个偏差值,需要在原有温度基础上修正偏差量

水产品培养温度比正常的样品要低,主要原因是水产品长期处于水中,生长环境温度较低。6.2.2如果样品中可能含有在琼脂培养基表面弥漫生长的菌落时,可在凝固后的琼脂表面覆盖一薄层琼脂培养基(约4mL),凝固后翻转平板,按6.2.1条件进行培养。6.3菌落计数6.3.1可用肉眼观察,必要时用放大镜或菌落计数器,记录稀释倍数和相应的菌落数量。菌落计数以菌落形成单位(colony-formingunits,CFU)表示。CFU指单个培养皿的菌落个数。6.3.2选取菌落数在30CFU~CFU之间、无蔓延菌落生长的平板计数菌落总数。低于30CFU的平板记录具体菌落数,大于CFU的可记录为多不可计。每个稀释度的菌落数应采用两个平板的平均数。6.3.3其中一个平板有较大片状菌落生长时,则不宜采用,而应以无片状菌落生长的平板作为该稀释度的菌落数;若片状菌落不到平板的一半,而其余一半中菌落分布又很均匀,即可计算半个平板后乘以2,代表一个平板菌落数。6.3.4当平板上出现菌落间无明显界线的链状生长时,则将每条单链作为一个菌落计数。

7结果与报告

7.1菌落总数的计算方法7.1.1若只有一个稀释度平板上的菌落数在适宜计数范围内,计算两个平板菌落数的平均值,再将平均值乘以相应稀释倍数,作为每g(mL)样品中菌落总数结果。7.1.2若有两个连续稀释度的平板菌落数在适宜计数范围内时,按式(1)计算:7.1.4若所有稀释度的平板菌落数均<30CFU,则应按稀释度最低的平均菌落数乘以稀释倍数计算。7.1.3若所有稀释度的平板上菌落数均>CFU,则对稀释度最高的平板进行计数,其他平板可记录为多不可计,结果按平均菌落数乘以最高稀释倍数计算。7.1.5若所有稀释度(包括液体样品原液)平板均无菌落生长,则以小于1乘以最低稀释倍数计算。7.1.6若所有稀释度的平板菌落数均不在30CFU~CFU之间,其中一部分<30CFU或>CFU时,则以最接近30CFU或CFU的平均菌落数乘以稀释倍数计算。7.2菌落总数的报告7.2.1菌落数小于CFU时,按“四舍五入”原则修约,以整数报告。

菌落数指计算后的结果,即公式(1)中的N

例如计算结果为35CFU/(g)mL,则报35CFU/(g)mL,不需要再修约。

7.2.2菌落数大于或等于CFU时,第3位数字采用“四舍五入”原则修约后,取前2位数字,后面用0代替位数;也可用10的指数形式来表示,按“四舍五入”原则修约后,采用两位有效数字。例如计算结果为,则报3CFU/(g)mL或3.5×CFU/(g)mL7.2.3若所有平板上为蔓延菌落而无法计数,则报告菌落蔓延。菌落蔓延时根本无法计数,只能报菌落蔓延,然后重测。再测时可在凝固的培养基表面倾注薄层培养基。7.2.4若空白对照上有菌落生长,则此次检测结果无效。

空白对照长菌,证明环境/试剂/工具有污染。

此条可理解为当空白对照没长菌落时,可以用“未检出”表示

7.2.5称重取样以CFU/g为单位报告,体积取样以CFU/mL为单位报告。附录A培养基和试剂A.1平板计数琼脂(platecountagar,PCA)培养基A.1.1成分

A.1.2制法

将上述成分加于蒸馏水中,煮沸溶解,调节pH至7.0±0.2。分装试管或锥形瓶,℃高压灭菌15min。

有商品化脱水培养基,不用自行调节pH,可直接使用,有效避免自配产生的误差。

其中样品为白色或偏白色时,培养基中可添加1%的无菌TTC进行菌落着色,着色后菌落为红色。

煮沸溶解:适用于自配培养基,商品化脱水培养基可不进行此操作(灭菌前需分装的培养基除外)

A.2磷酸盐缓冲液A.2.1成分贮存液:称取34.0g的磷酸二氢钾溶于mL蒸馏水中,用大约mL的1mol/L氢氧化钠溶液调节pH至7.2,用蒸馏水稀释至0mL后贮存于冰箱。A.2.2制法稀释液:取贮存液1.25mL,用蒸馏水稀释至0mL,分装于适宜容器中,℃高压灭菌15min。有商品化脱水培养基,直接使用,有效避免自配产生的误差。A.3无菌生理盐水A.3.1成分A.3.2制法称取8.5g氯化钠溶于0mL蒸馏水中,℃高压灭菌15min。预览时标签不可点收录于话题#个上一篇下一篇


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